细胞计数的目的是为了获取精确、可重复且具有统计意义的数据。这需要在已知细胞数量的情况下，准确计算细胞的数量和存活率。常见的细胞计数方法包括细胞计数板和细胞计数仪（如CountStar）。

细胞计数板的工作原理基于两个激光蚀刻网格，其设计用于在简单的光学显微镜下对样本中的细胞进行计数。通过计算网格中不同大小的方格内的细胞数，可以推算出整个样本中的细胞数目。

实验步骤包括清洁细胞计数板和盖玻片，打散细胞悬浮液，使用微量移液器将细胞样品加入细胞计数板中，让细胞填满网格。然后在显微镜下观察细胞，通过调整方格大小来准确计数。计数原则是记录每个方格中至少20-50个细胞的总数，并根据细胞密度计算平均细胞数。最终，通过特定公式计算出1毫升细胞样品中的细胞总数。

除了直接计数法，如血球计数板计数法、细胞计数仪和流式细胞仪，还存在间接计数法，例如MTT、结晶紫染色和考马斯亮蓝染色法等。这些方法通过染色剂对细胞或细胞核进行染色，然后计算吸光值变化或人工观察来完成计数。

在使用血球计数板进行细胞计数时，首先消化贴壁生长的细胞，将细胞重悬，然后按照特定步骤操作，包括擦拭计数板表面和盖玻片，制备单细胞悬液，吸取一定体积的细胞悬液，让其吸入盖玻片和计数板之间，最后在显微镜下观察并计算细胞总数，通过特定公式得到细胞浓度、个数及密度。

需要注意的是，血球计数板在使用过程中可能存在误差风险，如细胞悬液的制备、单细胞悬液的准备、计数阶段的规则、细胞数量的判断等。为减少误差，应遵循相关操作步骤和注意事项，以确保结果的准确性和可靠性。