在血液细胞分离技术中，嗜碱性粒细胞的分离通常采用Percoll密度梯度离心分离法。这一方法首先需配制Percoll混悬液，其包括Percoll、HBSS、HEPES和HCL等成分，确保PH值为7.4。然后，将这三种不同浓度的Percoll液层倒入离心管中，形成三个不同密度的梯度层。新鲜的抗凝血，通过0.1mol/EDTA PH 7.7进行抗凝处理，按等体积加入Percoll密度梯度分层液上，于室温下以1200r/min的转速离心25分钟。之后，将每一层细胞分别移入试管内，用无Ca,Mg离子的Hanks液进行3次洗涤，每次1200r/min离心10分钟，去除上清。最后，涂片、固定后用Wright-Giemsa染液染色，检查嗜碱性粒细胞，其染色为紫红色。

外周淋巴血细胞的分离则采用Ficoll密度梯度离心法。首先，用肝素抗凝的静脉血与Hank’s液按一定比例稀释，注意操作轻柔，确保两层界面清晰。在25度的条件下，以2000rpm离心20分钟。离心后，吸取中间白色云雾状的狭窄带，置于另一试管中，加入Hank’s液洗涤，离心1600rpm 8分钟，重复2次。之后，对细胞进行计数，并以一定浓度种到培养板中，加入营养液培养。

对于外周淋巴细胞的分离，首先将抗凝血缓慢加入淋巴细胞分离液上，以5ml生理盐水稀释血样。在室温下以500g离心20分钟。取中间的云雾状白色杂带，置于另一50ml离心管中。然后，用PBS洗涤，如混有红细胞，可使用红细胞裂解液进行处理。接着，以1000 rpm离心10分钟，重复操作。细胞以10%胎牛血清+RPMI1640重悬后，计数并调整至10ml进行培养。如果需要冻存，按照指定的冻存液（10%DMSO+20%胎牛血清+RPMI1640）操作，确保细胞在低温环境中得到妥善保存。

单核细胞的分离方法中，将抗凝血用等体积生理盐水稀释后加入Ficoll Hypaque分离液表面，以450 g离心25分钟收集单个核细胞。这些细胞用10小牛血清的RPMI一1640培养液悬浮，置于6x 6 cm玻璃培养皿中，在5％CO2、37℃下孵育2小时。收集贴壁的单核细胞，用0.2乳白蛋白的RPMI-1640培养液悬浮，Wright染色计数单核细胞，确保比例小于95％。调整细胞密度至4×10/ml后，加入细胞悬液于24孔培养板中，在5％CO2、37℃下培养24小时，离心收集上清液，用于后续实验。

在单个血小板的分离和保存过程中，首先在无菌操作下穿刺肘中静脉取血，使用2%EDTA (1:9)进行抗凝处理。然后，通过100 ×g离心10分钟，获得富血小板血浆(PR